Histological examination of Wistar line rats kidneys showed that intramuscular injection of 50% glycerol (0,8 ml per 100 gram of body weight) causes the development of acute renal failure which is characterized by violation of the main processes of ureagenesis such as filtration and reabsorbtion. Proteinuria and uremia were also noted. Besides, the expressed morphological changes of kidneys tissue were detectedin all tested animals. The examined group of animals with transplantation of the mesenchymal stem cells (MSC) received from a human placenta was characterized by less expressed morphological changes of kidneys in comparison with control group and tended to normalization of kidneys function and their histology.
multipotentmesenchymal stem cells, acute tubular necrosis, histological examination.
Поражение почек может сопровождаться преимущественным повреждением клубочкового аппарата (гломерулонефриты) или канальцевого (тубулопатии). Тубулопатии сопровождаются нарушением реабсорбции и секреции. Среди тубулопатий различают приобретенные и наследственные. К приобретенным относятся острая почечная недостаточность и хроническое поражение канальцевого аппарата (миеломная и подагрическая почка). Основой острой почечнойнедостаточности служит острый канальцевый некроз, причинами которого являются острая ишемия и токсическое поражение нефронов. Токсическое поражение нефронов может быть вызвано различными факторами. Одной из этиологических причин является токсическое поражение канальцев свободным миоглобином при повреждении скелетной мускулатуры, что, в свою очередь, может быть вызвано как травматическим повреждением мышечного аппарата, так и воздействием целого ряда препаратов. Основными симптомами при этом являются резкая олигурия и уремия. Гистологические изменения характеризуются вакуольной дистрофией и некротическими изменениями эпителия канальцев, особенно проксимальных их частей [3]. Ряд исследований доказывает положительный эффект клеточных препаратов на канальцевый некроз как токсического, так и ишемического генеза, что выражается в нормализации функционального и морфологического состояния почек [5, 6, 7]. Целью настоящей работы было изучение динамики морфологических изменений у крыс с рабдомиолизным канальцевым некрозом на фоне терапии мультипотентными мезенхимальными стромальными клетками (ММСК) плаценты человека.
1. Tseboeva A. A., Kokaev R. I., Bibaeva L. V. et al. Opportunities of stem cell therapy for toxic nephritis. Fundamental research.2014;10(7):1394–8.
2. Dzhioev I. G., Fidarova A. M. Some features of function and morphology of rats’kidneys in various experimental models of renal failure. Journal of New Medical Technologies. 2008; 1(XV): 38–9.
3. Nephrology: emergency conditions. Edited by N. A. Mukhin. 2010; 288.
4. Kholodenko I. V., Yarygin K. N., Gubsky L. V. et al. Intravenous xenotransplantation of human placental mesenchymal stem cells to rats: comparative analysis of homing in rat brain in two models of experimental ischemic stroke. Bull Exp Biol Med. 2012; 154(1): 118–23.
5. Geng Y., Zhang L., Fu B. et al. Mesenchymal stem cells ameliorate rhabdomyolysis-induced acute kidney injury via the activation of M2 macrophages. Stem Cell Res Ther. 2014; doi: 10.1186/scrt469.
6. Hossain M. A., Chowdhury T., Bagul A. Imaging modalities for the in vivo surveillance of mesenchymal stromal cells. J Tissue Eng Regen Med. 2014; doi: 10.1002/term.1907.
7. Zhang W., Liu L., Huo Y. et al. Hypoxia-pretreated human MSCs attenuate acute kidney injury through enhanced angiogenic and antioxidative capacities. Biomed Res Int. 2014; doi: 10.1155/2014/462472.
