Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирский институт антиоксидантов (лаборатория водорастворимых антиоксидантов, руководитель)
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
Новосибирск, Новосибирская область, Россия
На модели микобактериального гранулематозного воспаления in vitro исследовано влияние индукции редокс- чувствительной сигнальной системы антиоксидант-респонсивного элемента Keap1/Nrf2/ARE на динамику образования гранулём. Обнаружено, что активация системы Keap1/Nrf2/ARE приводит к ускорению процессов образования гранулём, которые затем сменяются процессами их диссоциации, что позволяет рассматривать систему Keap1/Nrf2/ARE как новую терапевтическую мишень в терапии туберкулеза.
гранулематозное воспаление, туберкулез, макрофаги, система Keap1/Nrf2/ARE, ТС-13
1. Зенков Н.К., Меньщикова Е.Б., Ткачёв В.О. Редокс-чувствительная сигнальная система Kеар1/Nrf 2/ARE как фармакологическая мишень // Биохимия. – 2013. – Т. 78, № 1. – C. 27–47.
2. Кожин П.М., Зенков Н.К., Лемза А.Е., Чечушков А.В., Зайцева Н.С., Кандалинцева Н.В., Меньщикова Е.Б. Влияние индукции редокс-чувствительной системы Keap1/Nrf2/ARE на классическую активацию макрофагов // Сибирский научный медицинский журнал. – 2015. – № 6. – C. 37–44.
3. Меньщикова Е.Б., Зенков Н.К., Чечушков А.В., Кожин П.М., Черданцева Л.А., Шаркова Т.В., Потапова О.В., Любимов Г.Ю., Любимова Г.А., Ягунов С.Е. Участие активированных кислородных метаболитов и редокс-чувствительной сигнальной системы Keap1/ Nrf2/ARE в развитии гранулематозного воспаления // Сибирский научный медицинский журнал. – 2015. – № 2. – С. 32–36.
4. Просенко А.Е., Клепикова С.Ю., Кандалинцева Н.В., Дюбченко О.И., Душкин М.И., Зенков Н.К., Меньщикова Е.Б. Синтез и исследование антиоксидантных свойств новых водорастворимых серосодержащих фенольных соединений // Бюлл. ВСНЦ СО РАМН. – 2001. – № 1. – С. 114–126.
5. Harvey CJ, Thimmulappa RK, Sethi S (2011). Targeting Nrf2 signaling improves bacterial clearance by alveolar macrophages in patients with COPD and in a mouse model. Sci. Transl. Med., 3 (78), 78ra32.
6. Lyamina SV, Kruglov SV, Vedenikin TY, Borodovitsyna OA, Suvorova IA, Shimshelashvili ShL, Malyshev IY (2012). Alternative reprogramming of M1/M2 phenotype of mouse peritoneal macrophages in vitro with interferon-γ and interleukin-4. Bull. Exp. Biol. Med., 152 (4), 548-551.
7. Olagnier D, Lavergne RA, Meunier E, Lefevre L, Dardenne C, Aubouy A, Pipy B (2011). Nrf2, a PPARγ alternative pathway to promote CD36 expression on inflammatory macrophages: implication for malaria. PLoS Pathog., 7 (9), e1002254.
8. Puissegur MP, Botanch C, Duteyrat JL, Delsol G, Caratero C, Altare F (2004). An in vitro dual model of mycobacterial granulomas to investigate the molecular interactions between mycobacteria and human host cells. Cellular microbiology, 6 (5), 423-433.
9. Rajendran P, Nandakumar N, Rengarajan T, Palaniswami R, Gnanadhas EN, Lakshminarasaiah U, Nishigaki I (2014). Antioxidants and human diseases. Clinica Chimica Acta, 436, 332-347.
10. Schwegmann A, Brombacher F (2008). Host-directed drug targeting of factors hijacked by pathogens. Sci. Signal., 1 (29), re8.
11. Stefanson AL, Bakovic M (2014). Dietary regulation of Keap1/Nrf2/ARE pathway: focus on plant-derived compounds and trace minerals. Nutrients, 6 (9), 3777-3801.
12. Tugal D, Liao X, Jain MK (2013). Transcriptional control of macrophage polarization. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 33 (6), 1135-1144.
13. Zumla A, Nahid P, Cole ST (2013). Advances in the development of new tuberculosis drugs and treatment regimens. Nat. Rev. Drug Discov., 12 (5), 388-404.
