аспирант
, Россия
, Россия
, Россия
ГРНТИ 69.25 Аквакультура. Рыбоводство
ОКСО 35.02.09 Ихтиология и рыбоводство
ББК 472 Рыбное хозяйство
В статье представлен алгоритм применения спектрофотометрического измерения, для определения численности клеток культур микроводорослей рода Tetraselmis, фильтрованных и нефильтрованных проб. Зависимость «плотность – численность клеток» аппроксимируется линейным уравнением, с высоким коэффициентом корреляции – более 75%, что подтверждает высокую достоверность метода. Возможность измерения плотности нефильтрованных проб культуры на спектрофотометре позволяет получить быструю оценку численности клеток как в полевых условиях, так и в промышленных масштабах.
оптическая плотность, численность, культура микроводорослей, Tetraselmis, массовое выращивание
1. Ковалев Н.Н. Культуральные и биохимические показатели микроводорослей Phaeodactylum tricornutum и Tetraselmis suecica в накопительных культурах / Н.Н. Ковалев, С.Е. Лескова, Е.В. Михеев, Ю.М.Позднякова и др. // Вестник Камчатского государственного технического университета. – 2020. – № 53. – С. 54-65.
2. Barkia I., Saari N., Manning S.R. Microalgae for high-value products towards human health and nutrition // Marine drugs. – 2019. – Vol. 17(5). – P. 304.
3. Kaparapu J. Application of Microalgae in Aquaculture // Phycological Society. – 2018. – Vol. 48. – Pp. 21-26.
4. Wang G., Xu J., Zeng C. et.al. Pelagic microalgae as suitable diets for the benthic harpacticoid copepod Tigriopus japonicas // Hydrobiologia. – 2015. – Vol. 762. – Pp. 81-88.
5. Lubzens E., Zmora O., Stottrup J. et all. Production and nutritional value of rotifers // Live feeds in marine aquaculture. – 2003. – Pp. 300-303.
6. Makridis P., Costa R.A., Dinis M.T. Microbial conditions and antimicrobial activity in cultures of two microalgae species, Tetraselmis chuii and Chlorella minutissima, and effect on bacterial load of enriched Artemia metanauplii // Aquaculture. – 2006. – Vol. 255. – Pp. 76-81.
7. Franklin N.M., Stauber J.L., Lim R.P. Development of flow cytometry-based algal bioassays for assessing toxicity of copper in natural waters // Envir. Toxicol. Chem. – 2001. – Vol. 20. – Pp. 160-170.
8. Günerken E., Hondt E.D., Eppink M. et all. Flow cytometry to estimate the cell disruption yield and biomass release of Chlorella sp. during bead milling // Algal Research. – 2017. – Vol. 25. – Pp. 25-31.
9. Хунджуа Д.А. Применение спектрально-оптических методов для характеристики выращенных при различных условиях микроводорослей Scenedesmus quadricauda / Д.А. Хунджуа, А.В. Харчева, В.А. Терехова, М.М. Гладкова и др. // Процессы в геосредах. – 2015. – Т. 1. – С. 87-95.
10. Копытов Ю.П. Методика комплексного определения биохимического состава микроводорослей / Ю.П. Копытов, А.С. Лелеков, Р.Г. Геворгиз, М.В. Нехорошев и др. // Альгология. – 2015. – Т. 25(1). – С. 35-40.
11. Sing S.F., Isdepsky A., Borowitzka M.A. et all. Pilot-scale continuous recycling of growth medium for the mass culture of a halotolerant Tetraselmis sp. in raceway ponds under increasing salinity: a novel protocol for commercial microalgal biomass production // Bioresource technology. – 2014. – Vol. 161. – Pp. 47–54.
12. Pereira H., Silva J., Santos T. at all. Nutritional potential and toxicological evaluation of Tetraselmis sp. CTP4 microalgal biomass produced in industrial photobioreactors // Molecules. – 2019. – Vol. 24(17). – P. 3192.
