В работе представлены результаты измерения кинетики длительной люминесценции эритрозина в опухолях и здоровых тканях молочной железы лабораторных мышей. Обнаружен эффект тушения замедленной флуоресценции в режиме строб-периодического возбуждения люминесценции, зависимый от частоты следования лазерных импульсов. Установлена связь описанного эффекта с уменьшением вклада в свечение реакций кросс-аннигиляции триплет-возбуждённого люминофора и синглетного кислорода. Проанализировано влияние тушения замедленной флуоресценции на интенсивность фосфоресценции зонда. Показано, что с помощью описанного явления можно оценить расходование тканевого кислорода в ходе фотодинамических процессов.
замедленная флуоресценция, биологические ткани, синглет-триплетная аннигиляция, синглетный кислород
1. Krasnovsky A. A. (Jr.) Primary Mechanisms of Photoactivation of Molecular Oxygen. History of Development and the Modern Status of Research. Biochemistry (Moscow), 2007, vol. 72, pp. 1065-1080.
2. Letuta S. N., Kuvandykova A. F., Pashkevich S. N., Saletskii A. M. Features of the delayed fluorescence kinetics of exogenous fluorophores in biological tissues. Russian Journal of Physical Chemistry A, 2013, vol. 87, pp. 1582-1587.
3. Кучеренко М.Г. Кинетика молекулярных фотопроцессов. Постановка и решение задач. Оренбург: ООО ИПК «Университет», 2012, 190 c. [Kucherenko M.G. Kinetics of molecular photo processes. Problem formulation and solutions. Orenburg: ООО IPC «Universitet», 2012, 190 p. (In Russ.)].
4. Berezin M.Y., Achilefu S. Fluorescence lifetime measurements and biological imaging. Chem. Rev., 2010, vol. 110, pp. 2641-2684.
5. Plaetzer K., Krammer B., Berlanda J., Berr F., Kiesslich T. Photophysics and photochemistry of photodynamic therapy: fundamental aspects. Lasers Med. Sci., 2009, vol. 24, pp. 259-268
6. Узденский А.Б. Клеточно-молекулярные механизмы фотодинамической терапии. СПб.: Наука, 2010, 192 c. [Uzdensky A.B. Cell and molecular mechanisms of photodynamic therapy. Saint-Peterburg: Nauka, 2010, 129 p. (In Russ.)]
7. Snyder J.W., Skovsen E., Lambert J.D.C., Poulsen L., Ogilby P.R. Optical detection of singlet oxygen from single cells. Phys. Chem. Chem. Phys., 2006, vol. 8, pp. 4280-4293
8. Li B., Lin H., Chen D., Wilson B.C., Gu Y. Singlet oxygen detection during photosensitization. J. Innov. Opt. Health Sci., 2013, vol. 6, pp. 1330-1332.
9. Papkovsky, D., Zhdanov, A.V., Fercher, A., Dmitriev, R., Hynes, J. Phosphorescent Oxygen-Sensitive Probes. Springer Briefs in Biochemistry and Molecular Biology, 2012, pp. 1245-1255.
10. Dmitriev R.I., Papkovsky D.B. Optical probes and techniques for O2 measurement in live cells and tissue. Cell. Mol. Life Sci., 2012, vol. 69, pp. 2025-2039.
11. Scholz M., Dědic R., Valenta J., Breitenbach T., Hàla J. Real-time luminescence microspectroscopy monitoring of singlet oxygen in individual cells. Photochem. Photobiol. Sci., 2014, vol. 13, pp. 1203-1212.
12. Letuta S.N., Kuvandykova A.F., Pashkevich S.N. The Kinetics of Exogenous Phosphors Delayed Fluorescence in Tissues. J. Anal. Oncology, 2012, vol. 1, pp. 107-110.
13. Moiseeva E.V. Original approaches to test antibreast cancer drugs in a novel set of mouse models. Utrecht: Proefschrift Universiteit Utrecht, 2005, 191 p.
14. Veuthey T., Herrera G., Dodero V.I. Dyes and Stains: from molecular structure to histological application. Frontiers in Bioscience, 2014, vol. 19, pp. 91-112.
15. Baker A., Kanofsky J.R. Quenching of singlet oxygen by biomolecules from L1210 leukemia cells. Photochem. Photobiol., 1992, vol. 55, p. 523.
