Проведено исследование роста накопительной культуры Spirulina platensis при различном спектральном составе светодиодного излучения в плоскопараллельных фотобиореакторах. В опытных вариантах использовали мощные (50 Вт) светодиоды теплого, холодного света, а также фитосветодиод. В контрольном варианте источником света являлась световая решётка из 10 люминесцентных ламп TDM Electric 18 Вт. Показано, что максимальная продуктивность S. platensis не зависит от спектра излучения светодиода и составляет 0,37 г СВ·л-1·сут-1. При этом в контрольном варианте максимальная продуктивность была на 30 % ниже. Максимальная значение биомассы S. platensis достигнуто при использовании мощного светодиода холодного света. На линейной фазе роста рассчитана эффективность преобразования световой энергии (КПД фотобиосинтеза): для фитосветодиода данная величина была минимальна и составила 1,67 %; для теплого светодиода - максимальна и равнялась 6,47 %.
фотоавтотрофы, накопительная культура, максимальная продуктивность, фотобиосинтез, мощный светодиод
1. Козел Н.В., Доманский В.П., Мананкина Е.Е., Адамчик К.О. [и др.] Влияние спектрального состава светодиодного излучения на структуру фотосинтетического аппарата Spirulina platensis. Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі, 2015, № 2, c. 44-49. [Kozel N.V. Domansky V.P., Manankina E.E., Adamczyk K.O. [et al.] The effect of the spectral composition of the led emission on the structure of the Spirulina platensis photosynthetic apparatus. Vescі Nacyyanal'naj akadehmіі navuk Belarusі, 2015, no. 2, pp. 44-49. (In Russ.)]
2. Huanyang W. Effect of different light qualities on growth, pigment content, chlorophyll fluorescence, and antioxidant enzyme activity in the red alga Pyropia haitanensis (Bangiales, Rhodophyta). Biomed. Res. Int., 2016, DOI: 10.1155/2016/7383918.
3. Nwoba E.G. Effect of selected light spectra on the growth of Chlorella spp. (Chlorophyta). Nig. J. Biotech., 2017, vol. 32, pp. 69-76, DOI: 10.4314/njb.v32i1.10.
4. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С., Боровков А.Б., Новикова Т.М. Унифицированная установка для лабораторных исследований микроводорослей. Вопросы современной альгологии, 2017, № 1 (13), URL: http://algology.ru/1097. [Trenkenshu R.P., Lelekov A.S., Borovkov A.B., Novikova T.M. Unified setup for laboratory studies of microalgae. Voprosy sovremennoj al'gologii, 2017, no. 1 (13), URL: http://algology.ru/1097. (In Russ.)]
5. Тренкеншу Р.П., Лелеков А.С., Новикова Т.М. Линейный рост морских микроводорослей в культуре. Морской биологический журнал, 2018, т. 3, № 1, с. 53-60, DOI: 10.21072/mbj.2018.03.1.06. [Trenkenshu R.P., Lelekov A.S., Novikova T.M. Linear growth of marine microalgae in culture. Morskoj biologicheskij zhurnal, 2018, vol. 3, no. 1, pp. 53-60, DOI: 10.21072/mbj.2018.03.1.06. (In Russ.)]
6. Геворгиз Р.Г., Шматок М.Г. Лелеков А.С. Расчёт КПД фотобиосинтеза у низших фототрофов. 1. Непрерывная культура. Экология моря, 2005, вып. 70, с. 31-36. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=25457247. [Gevorgiz R.G., Shmatok M.G., Lelekov A.S. Calculation of photobiosynthesis efficiency in lower phototrophs.
7. Continuous culture. Ekologiya morya, 2005, vol. 70, pp. 31-36, URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=25457247. (In Russ.)]
