Проведена оценка активности ферментов метаболизма активных форм кислорода (АФК) - НАДФН-оксидазы, каталазы, супероксиддис-мутазы и пероксидазы и интенсивности све-товой эмиссии механически поврежденного мицелия светящегося гриба Neonothopanus nambi без и при добавках экзогенной салицило-вой кислоты (СК). Показано, что в условиях острого эксперимента, после повреждения образцов мицелия и последующей их инкубации в питательной среде, в течение короткого (6-7 часов) интервала времени наблюдается значительное (на 2 порядка и более) увеличе-ние уровня световой эмиссии гриба. Повыше-ние свечения регистрируется на фоне суще-ственного снижения в мицелии активности супероксиддисмутазы (СОД) и общей перокси-дазной активности. При этом уровень актив-ности НАДФН-оксидазы в грибе практически не меняется в течение всего эксперимента, а активность каталазы незначительно возрас-тает. Установлено, что добавка СК в среду инкубации заметным образом подавляет све-товую эмиссию мицелия N. nambi. При этом выявлено, что экзогенная СК активирует все изучаемые ферменты метаболизма АФК за исключением каталазы, активность которой несущественно снижается. Установлено, что эффекты СК являются дозозависимыми и на-растают с увеличением концентрации реа-гента. Совокупность полученных данных со-гласуется с высказанной нами ранее гипоте-зой, что грибное свечение является дополни-тельным механизмом антиоксидантной за-щиты от повреждающего действия АФК. На-блюдаемое в работе значительное увеличение световой эмиссии поврежденного мицелия при снижении активности СОД, особенно общей пероксидазной активности, может свиде-тельствовать о запуске в грибе этого меха-низма защиты от АФК, прежде всего от Н2О2 и иных пероксидных соединений.
активные формы кисло-рода, светящиеся грибы, салициловая кисло-та, НАДФН-оксидаза, каталаза, супероксид-дисмутаза, пероксидаза
1. Бондарь В.С., Пузырь А.П., Пуртов К.В. [и др.]. О люминесцентной системе светя-щегося гриба Neonothopanus nambi // ДАН. - 2011. - Т. 438. - № 5. - С. 705-707.
2. Bondar V.S., Shimomura O., Gitelson J.I. Lu-minescence of higher mushrooms // J. Sib. Fed. Univ. Biol. - 2012. - V. 5. - №. 4. - P. 331-351.
3. Бондарь В.С., Родичева Э.К., Медведева С.Е. [и др.]. О механизме свечения гриба Neonothopanus nambi // ДАН. - 2013. - Т. 449. - № 2. - С. 223-227.
4. Бондарь В.С., Пузырь А.П., Пуртов К.В. [и др.]. Выделение люминесцентной систе-мы из светящегося гриба Neonothopanus nambi // ДАН. - 2014. - Т. 455. - № 3. - С. 346-348.
5. Могильная О.А., Ронжин Н.О., Медведева С.Е. [и др.]. Общая пероксидазная и ката-лазная активности светящихся базидиоми-цетов Armillaria borealis и Neonothopanus nambi в сравнении с уровнем световой эмиссии // Прикладная биохимия и микро-биология. - 2015. - Т. 51. - № 4. - С. 395-401.
6. Medvedeva S.E., Artemenko K.S., Krivosheenko A.A. [et al.]. Growth and light emission of luminous basidiomycetes cultivat-ed on solid media and in submerged culture // Mycosphere. - 2014. - V. 5. - P. 565-577.
7. Kobzeva T.V., Melnikov A.R., Karogodina T.Y. [et al.]. Stimulation of luminescence of myceli-um of luminous fungus Neonothopanus nambi by ionizing radiation // Luminescence. - 2014. - V. 29. - P. 703-710.
8. Тюлькова Н.А., Медведева С.Е., Бондарь В.С. Сравнительная оценка интенсивностей перекисного окисления липидов и свечения гриба Neonothopanus nambi // Вестник КрасГАУ. - 2016. - № 1. - С. 21-28.
9. Mogilnaya O.A., Ronzhin N.O., Bondar V.S. Comparative evaluation of total peroxidase and catalase activities during light emission of luminous fungus Neonothopanus nambi // Mycosphere. - 2016. - V. 7. - P. 499-510.
10. Desican R., Mackerness S.A., Hancock J.T. [et al.]. Regulation of the Arabidopsis transcriptome by oxidative stress // Plant Physiol. - 2001. - V. 127. - P. 159-172.
11. Тарчевский И.А. Сигнальные системы кле-ток растений. - М.: Наука, 2002. - 294 с.
12. Гесслер Н.Н., Аверянов А.А., Белозерская Т.А. Активные формы кислорода в регуля-ции развития грибов // Биохимия. - 2007. - Т. 72. - № 10. - С. 1091-1109.
13. Vranova E., Inze D., Van Breuegegem F. Sig-nal transduction during oxidative stress // J. Exp. Bot. - 2002. - V. 53. - P. 1227-1236.
14. Jaspers P., Kangasjarvi J. Reactive oxygen species in abiotic stress signaling // Physiol. Plant. - 2010. - V. 138. - P. 405-413.
15. Колупаев Ю.Е., Карпец Ю.В. Активные формы кислорода при адаптации растений к стрессовым температурам // Физиология и биохимия культурных растений. - 2009. - Т. 41. - № 2. - С. 95-108.
16. Карпун Н.Н., Янушевская Э.Б., Михайлова Е.В. Механизмы формирования неспеци-фического индуцированного иммунитета у растений при биогенном стрессе // Сель-скохозяйственная биология. - 2015. - Т. 50. - № 5. - С. 540-549.
17. Apel K., Hirt H. Reactive oxygen species: me-tabolism, oxidative stress, and signal transduction // Annu. Rev. Plant Biol. - 2004. - V. 55. - P. 373-399.
18. Колупаев Ю.Е., Ястреб Т.О. Стресс-протекторные эффекты салициловой ки-слоты и ее структурных аналогов // Физио-логия и биохимия культурных растений. - 2013. - Т. 45. - № 2. - С. 113-126.
19. Белых Ю.В., Кириллова Н.В., Спасенков А.И. Влияние салициловой кислоты на ан-тиоксидантную и прооксидантную активно-сти в растительных клетках // Вестник Санкт-Петербургского университета. - 2009. - Вып. 2. - С. 145-151.
20. Молодченкова О.О. Влияние салициловой кислоты на ответные реакции проростков кукурузы при абиотических стрессах // Вісник Харківського національного аграрно-го університету. - 2008. - Вип. 3(15). - С. 24-32.
21. Абилова Г.А. Участие салициловой кислоты в системе антиоксидантной защиты у три-тикале при действии ZnSO4 // Вестник Да-гестанского государственного университе-та. - 2013. - Вып. 1. - С. 124-127.
22. Фенько А.А., Репкина Н.С., Таланова В.В. Влияние салициловой кислоты на холодо-устойчивость проростков огурца // Тр. Ка-рельского научного центра РАН. - 2015. - № 11. - С. 26-34.
23. Fujita M., Fujita Y., Noutoshi Y. [et al.]. Cross-talk between abiotic and biotic stress respons-es: a current view from the points of conver-gence in the stress signalling networks // Curr. Opin. Plant Biol. - 2006. - № 9. - P. 436-442.
24. Kaur N., Gupta A.K. Signal transduction path-ways under abiotic stresses in plant // Curr. Sci. - 2005. - V. 88. - № 11. - P. 1771-1780.
25. Lushchak V.I. Adaptive response to oxidative stress: Bacteria, fungi, plants and animals // Comp. Biochem. Physiol. Part C. - 2011. - V. 153. - P. 175-190.
26. Chen Z., Silva H., Klessig D.F. Active oxygen species in the induction of plant systemic ac-quired resistance by salicylic acid // Science. - 1993. - V. 262. - № 5141. - P. 1883-1886.
27. Barna B., Adam A.L., Gulner G. [et al.]. Role of antioxidant systems and juvenility in tolerance of plants to diseases and abiotic stresses // Acta Phytopathol. Entomol. Hung. - 1995. - V. 30. - P. 39-45.
28. Rao M.V., Paliyaht G., Ormrod D.P. [et al.]. Influence of salicylic acid on H2O2 production, oxidative stress, and H2O2-metabolizing en-zymes (salicylic acid-mediated oxidative dam-age requires H2O2) // Plant Physiol. - 1997. - V. 115. - P. 137-149.
29. Полесская О.Г., Каширина Е.И., Алехина Н.Д. Изменение активности антиоксидант-ных ферментов в листьях и корнях пшени-цы в зависимости от формы и дозы азота в среде // Физиология растений. - 2004. - Т. 51. - С. 686-691.
30. Aeby H. Catalase in vitro // Methods Enzymol. - 1984. - V. 105. - P. 121-126.
31. Вольский H.H., Козлов В.А., Лозовой В.П. Влияние гидрокортизона на продукцию су-пероксидного радикала фагоцитирующими клетками селезенки // Бюл. эксперимен-тальной биологии и медицины. - 1987. - Т. 103. - № 6. - С. 694-696.
32. Wi S.J., Ji N.R., Park K.Y. Synergistic biosyn-thesis of biphasic ethylene and reactive oxy-gen species in response to hemibiotrophic phytophthora parasitica in tobacco plants // Physiol. Plant. - 2012. - V. 159. - № 1. - P. 251-265.
33. Okey E.N., Duncan E.J., Sirju-Charran G. Phy-tophthora canker resistance in cacao: Role of peroxidase, polyphenoloxidase and phenylal-anine ammonialyase // J. Phytopathol. - 1997. - V. 145. - № 7. - P. 295-299.
